Producción de poliacetatos para la industria camaronera ecuatoriana

Evaluación de la reproducción de especies potenciales, parámetros culturales.

Los polycags vivos son un cebo importante para la familia de camarones Penaeid durante su maduración inducida en criaderos comerciales de camarones.

El uso de policélulas vivas en la fase de maduración de la familia de camarones Penaeid mejora la calidad y cantidad de los nauplios de camarón (larvas de camarón; etapa) producidos. Familias Australonuphis sp. y Perinereis sp. se ha utilizado como alimento de maduración para las familias camaroneras americanas y asiáticas, y muchos estudios han descrito específicamente los beneficios de usar este último en la maduración del camarón, especialmente para el camarón blanco del Pacífico (Litopenaeus vannamei) en países asiáticos productores de camarón.

Los laboratorios de maduración de camarones utilizan conjuntos de poliestireno capturados en el entorno natural de todo el mundo, pero debido a preocupaciones de bioseguridad, esta práctica presenta importantes peligros biológicos para la industria. Existe la necesidad de una fuente de fuentes de maduración de alta calidad que mejoren efectivamente la reproducción del camarón y también presenten riesgos biológicos.

Nosotros inicialmente examinado e identificado policélulas locales en la costa de Ecuador (abril de 2019) y concluyó que las familias de Australonuphi, Lumbriner y Perinereis son buenas candidatas para la investigación sobre su biología reproductiva y parámetros culturales. En este artículo – adaptado y resumido original (Revista Acuacultura-Cámara Nacional de Acuacultura, No. 129, junio de 2019) – Realizamos un estudio para seleccionar una familia adecuada de policitos aptos para la producción de animales vivos libres de enfermedades para la familia del camarón en Ecuador.

Configuración de estudio

Educación

El estudio de la biología reproductiva y los parámetros de cultivo da como resultado la capacidad de mantener condiciones óptimas de producción para las especies cultivadas, por lo que diseñamos un sistema de circulación de agua (RAS) que asegura la calidad del agua requerida mediante filtración mecánica y biológica. El sistema consta de cuatro tanques, que abastecen, cultivan y estudian los diferentes tipos de polisqueles en estudio. El agua de mar se regula a una salinidad y temperatura constantes, y se ha mantenido un registro diario de una serie de parámetros: pH, alcalinidad, amonio, nitritos y nitratos.

La facilidad de manejo de los animales es un aspecto clave del crecimiento de una gran cantidad de policitos, y hemos evaluado si los animales escapan de sus tanques cuando excavan en los sedimentos del fondo y si pueden tolerar el manejo sin daño físico. se manipulan durante la limpieza y recolección del sustrato.

El cultivo de poliacetatos solo tiene éxito si los animales reciben el alimento destinado a su cultivo. Hemos evaluado la aceptación de dos tipos de alimento – dieta fresca y seca – por diferentes polysets, y la aceptación de alimento seco facilita el mantenimiento de las condiciones específicas libres de patógenos (SPF) de la unidad de producción de polyheet.

Reproducción

Hemos realizado observaciones para la presencia de animales reproductores en el sistema de cultivo utilizando tanto un microscopio estereoscópico (oculares 10x y 20x; lentes 2x y 4x) como un microscopio óptico (oculares 10x y 20x; lentes 4x, 10x, 20x y 100x)).

Una vez que se identificaron los criaderos de cada familia de policitas, evaluamos su maduración observando los óvulos y espermatozoides de estos individuos a través de la tarea (cubierta exterior del cuerpo). Luego se tomaron muestras de ovocitos y espermatozoides para evaluar su maduración.

La forma esférica y un determinado óvulo indican la condición óptima de fertilización. En el caso del semen, la motilidad de los espermatozoides proporciona un indicador óptimo del estado. Una vez identificados los individuos maduros en condiciones óptimas para la fertilización, se implementaron protocolos de fertilización específicos para cada una de las familias de policitos estudiados, con el objetivo final de estandarizar los protocolos de fertilización y obtener larvas de polyheta mediante procedimientos confiables y reproducibles.

Resultados y discusión

Australonuphis sp. causó problemas con la supervivencia a largo plazo de los adultos en el sistema RAS, aunque los individuos más jóvenes parecen ser más resistentes y adaptables. A pesar de su alta mortalidad en el sistema de cultivo, las muestras se almacenan en tanques de cultivo y se entierran en sedimentos del fondo, y no se ha observado ningún escape. Por el contrario, Lumbrineris sp. y Perinereis sp. los individuos se adaptan mejor al entorno cultural, se entierran fácilmente en los sedimentos, escapan de los tanques y viven varias semanas.

La facilidad de manejo de los animales de granja es un tema clave a la hora de decidir sobre la producción de una especie u otra. Australonuphis sp. Ha causado muchos problemas en este sentido, ya que la manipulación del personal ha provocado estrés y deterioro espontáneo a los animales. Lumbrineris sp. y Perinereis sp., la manipulación ha sido posible porque los animales son más resistentes. Esto indica que la recolección de ejemplares de tamaño comercial de estas dos familias de policitos puede realizarse sin problemas, haciendo atractivo su cultivo.

Hemos observado que las familias Australonuphis sp. y Lumbrineris sp. no atrae forrajes frescos o secos. Perinereis sp. Los capturados en la isla de Jambelí han mostrado interés por ambos tipos de piensos en el sistema cultural desde el primer día, y esto nos ha permitido mantener a estos animales en condiciones saludables durante mucho tiempo.

Algunos Australonuphis sp. los especímenes recién capturados mostraron características típicas de los especímenes maduros. En algunas hembras se han observado óvulos, que pueden identificarse por un color verdoso en la parte posterior del cuerpo o, en los machos, por un color blanco rosado. Se ha observado transparencia tanto de óvulos como de espermatozoides a través del factor animal.

Hemos encontrado huevos en desarrollo (de 30 a 100 μm de diámetro) de Australonuphis sp. hembras y huevos de maduración más avanzada en otros individuos (220-240 μm de diámetro). También se han observado espermatozoides desarrollados y móviles en Australonuphis sp. (Figura 1).

Figura 1: Australonuphis sp. – colas (derecha). Australonuphis sp. «huevos (de 30 a 100 μm de diámetro)» significa las notas de las células del jardín de infancia (NC) que ayudan a que los huevos se desarrollen en una etapa temprana (izquierda).

Lumbrineris sp. No se encontraron especímenes maduros en los puntos de recolección. Sin embargo, después de algunas semanas, la hembra desarrolló una gran cantidad de huevos en el sistema de cultivo (Figura 2). No se pudo realizar la fertilización ya que no se observaron machos maduros en los tanques RAS.

Figura 2: Lumbrineris sp. una hembra que libera huevos en desarrollo.

Algunos Perinereis sp. son óvulos y espermatozoides producidos en condiciones de cultivo. Estos individuos iniciaron una transformación morfológica que caracteriza a muchos de estos policitos que ocurren antes de reproducirse, con algunos individuos alterando y desarrollando ojos agrandados, morfología más plana y acortamiento de la longitud corporal. Las hembras maduras eran de color verdoso (debido a la presencia de huevos en el interior) y los machos eran de color blanco rosado debido al contenido de esperma en el semen (cavidad corporal).

Hemos logrado varios cientos de Australonuphis sp. utilizando métodos de propagación de policetato y la Tabla 1 proporciona observaciones relevantes sobre fertilización y desarrollo larvario. Encontramos que la primera división mitótica ocurre dentro de los 60 minutos posteriores al inicio del tiempo de exposición del óvulo-esperma a la temperatura y salinidad del agua previstas para esta especie.

Naranjo, polihadatos, Tabla 1

Día (horas) Longitud (μm) Aspecto

Empezar 240 Huevos (fertilización) 0
Día 0 (1 hora) 240 Dos células (primera división mitótica) 0
0 día (7 horas) 240 Embriones rotativos 0
Día 4 640 Larvas con estructuras diferenciadas (ojos, mandíbulas, patas) 5
Dia 5 680 Larvas con estructuras diferenciadas (ojos, mandíbulas, patas) 5
Día 6 755 Larvas con estructuras diferenciadas (ojos, mandíbulas, patas) 6

Cuadro 1. Australonuphis sp. Sp. Desarrollo observado de embriones y larvas (adaptado del original).

Siete horas después de la primera división, se observan embriones en desarrollo, flotando en la columna de agua en un movimiento giratorio. En los días siguientes, se observó que los embriones se transformaron en larvas piriformes, que nadaron hasta el fondo de los recipientes de cultivo. Después de cuatro días y después, se pudieron observar larvas vermiformes (parecidas a gusanos) nadando cerca del fondo de los contenedores e incluso caminando por encima de la superficie. Estas larvas ya tenían estructuras distintivas como ojos, mandíbulas y patas (estructuras en forma de cepillo o en forma de cabello) que se utilizan para el movimiento.

Hemos aislado Perinereis sp. Se han obtenido ovocitos y espermatozoides (epitocales) del resto de especímenes para fecundación y se han obtenido cientos de larvas que se desarrollan según el esquema de la Tabla 2. 60 minutos después del inicio de la exposición de óvulos y espermatozoides, se observó la primera distribución mitótica. A las 24 horas, se observaron varios embriones en rotación dentro de la cápsula embrionaria. Después de tres a cinco días, se observaron larvas bentónicas y de tres a cinco sedigers (segmentos de cerdas) con estructuras bien diferenciadas como ojos, antenas y estructuras anales.

Naranjo, polihadatos, Tabla 2

Día (horas / meses) Longitud (μm / mm / cm) Aspecto

Empezar 250-300 μm Huevos (fertilización) 0
1 hora. 250-300 μm Dos células (primera división mitótica) 0
Día 1 300 micras Embriones rotativos 0
3.-5. Día 350-500 micras Las larvas bentónicas están evolucionando 3-5
Día 23 2 mm Juveniles diferenciados (ojos, mandíbulas, palmas, antenas y quets) 12
Quinto mes 8-15 cm Animales en cultura / adultos varias docenas

Cuadro 2. Desarrollo y crecimiento de larvas de Perinereis sp. durante la temporada de crecimiento (adaptado del original).

Perinereis sp. la longitud de los juveniles obtenidos durante estas primeras inseminaciones fue de 2 mm, 12 setigres y estructuras como ojos, mandíbulas, antenas y estructuras anales a los 23 días (Figura 3). Después de cinco meses, los sujetos habían alcanzado una longitud de 8 a 15 cm (Figura 4).

Figura 3: Australonuphis sp. De seis días de edad, larva de 755 μm de largo (izquierda). Minor Perinereis sp. De 23 días de edad, 2 mm de largo. (a la derecha).

Después de la primera fertilización, se han obtenido más ejemplares mediante el mismo procedimiento. A partir de este hito, se espera que los individuos alcancen la edad adulta, maduren y se reproduzcan. El objetivo es lograr una masa crítica de individuos reproductores que puedan respaldar las actividades de la cultura empresarial.

Figura 4: Perinereis sp. ejemplares de cinco meses de edad y de 8 a 15 cm de largo.

Perspectivas

Australonuphis sp. y Lumbrineris sp. podríamos ser buenos candidatos para la cultura en base a lo que sabemos ahora sobre su reproducción y cría de animales. Sin embargo, Australonuphis sp. y la falta de datos sobre fertilización larvaria y Lumbrineris sp. recomendar Perinereis sp. como una mejor alternativa por sus características de manipulación, absorción y reproducción alimentaria.

El próximo objetivo es iniciar Perinereis sp. Producción y hemos diseñado una planta piloto donde se crían las primeras generaciones de ejemplares. Una vez alcanzada la masa crítica de la planta de incubación, iniciaremos la producción industrial en condiciones SPF.

Referencias disponibles del primer autor.

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