Consumo de bioflock por postlarvas de camarón blanco del Pacífico

Uso de técnicas de isótopos estables para determinar la idoneidad de las fuentes de alimentos.

Diferentes fuentes de alimento utilizadas en el experimento (A: Artemia; B: biocolecciones; C: alimentos acuáticos comerciales; D: ciliados; E, F: microalgas) y postes de camarón (G, H).

En las primeras etapas del cultivo de camarón marino, una dieta que contenga alimentos vivos puede ser más eficaz como fuente de alimento, ya que estos alimentos permanecen viables en la columna de agua por más tiempo y se digieren bien. Sin embargo, la producción y el mantenimiento de alimentos vivos son costosos y dependen de trabajadores altamente capacitados.

Sistemas de cultivo Biofloc: BFT (tecnología Biofloc) puede ser una buena fuente de alimento vivo durante la fase de crecimiento de la producción de camarones marinos. Esta tecnología se basa en la adición de una fuente de carbono orgánico que utilizan las bacterias para convertir el exceso de nitrógeno de la biomasa microbiana en los tanques de producción y así reducir el intercambio de agua. En las primeras etapas del cultivo de larvas de camarón (desde la fase PL-1 hasta la PL-30), la producción de camarón generalmente se lleva a cabo en sistemas de agua limpia, agregando alimentos como fitoplancton, zooplancton (Artemia sp.) Y piensos comerciales, y utilizando altas tasas de intercambio de agua. Una alimentación alternativa puede ser agregar sistemas BFT a estas primeras etapas de la vida. Sin embargo, se necesita información sobre el consumo y la adopción de bioflocks de postgrados de camarones jóvenes en desarrollo.

Producción de alimento vivo para el estudio. A&B: Cultura de Artemia; C&D: cultivos de microalgas; E: Recolección de nauplios de Artemia encapsulados.

La técnica de isótopos estables se ha utilizado como complemento a los métodos convencionales utilizados en estudios dietéticos, ya que puede mostrar la proporción de cada presa / alimento ingerido en carnívoros. El principio de esta técnica es que los isótopos estables de los diversos elementos químicos en los tejidos animales reflejan la relación en los alimentos consumidos y se registran como una firma en los tejidos recién formados del animal consumidor.

Configuración de estudio

Gestión del sistema infantil.

El experimento duró 30 días, comenzando con postlarvas de camarón de un día (PL1) y utilizó dos estrategias diferentes para controlar el amoníaco cuando la concentración alcanzó 0.5 mg / l. La primera estrategia fue el intercambio de agua a una tasa de alrededor del 70 por ciento del volumen total (tratamiento de control) y la segunda estrategia involucró la fertilización orgánica con dextrosa (tratamiento BFT) sin intercambio de agua.

En ambos tratamientos, los camarones fueron alimentados con tres alimentos comerciales (CF) diferentes según la etapa de desarrollo del animal; los camarones fueron alimentados tres veces al día con alimentos comerciales y una vez congelados con Artemia sp. nauplios. Se inocularon microalgas Chaetoceros mueller en tanques de prueba el primer día de la prueba a una concentración de 5 x 104 células / ml.

Pesaje de muestras para análisis de isótopos estables.

Se midieron diariamente el oxígeno disuelto, la temperatura y el pH para controlar la calidad del agua. Se analizó amoniaco (N- (NH3 + NH4 +)) cada dos días. Se midieron semanalmente nitrito (N-NO2-) y fosfato (P-PO43-). Se determinaron alcalinidad (mg / L CaCO3) y nitrato (N-NO3-) en las muestras inicial y final. El rendimiento de crecimiento de los animales experimentales se evaluó por tamaño, peso y supervivencia.

Se recolectaron muestras de diferentes fuentes de alimentos, bioflocks y progenie de camarón los días 10, 20 y 30 del experimento para determinar los valores de isótopos de carbono y nitrógeno. Todas las muestras se molieron, se pesaron y se colocaron en cápsulas de estaño. Los análisis de isótopos de carbono (13C / 12C) y nitrógeno (15N / 14N) se realizaron en la instalación de isótopos estables de UC Davis, CA, EE. UU. Se utilizó el modelo de mezcla de isótopos bayesianos (paquete SIAR) para determinar la contribución relativa de las fuentes de alimento al crecimiento del camarón en diferentes períodos de cultivo.

Resultados y perspectivas

El experimento no reveló diferencias en el análisis de los peligros posteriores a la lava del camarón (Tabla 1) o en los parámetros de calidad del agua (Tabla 2), todos los cuales estuvieron dentro de los valores recomendados para L. vannamei. Los alimentos comerciales aumentaron la proporción de animales en ambos tratamientos (Figuras 1 y 2). Sin embargo, observamos que la proporción de biocombustible fue de alrededor del 50 por ciento (Figura 2). En el tratamiento de BFT, los bioflocks parecen jugar un papel importante en el desempeño de las postlarvas de L. vannamei. Las microalgas hicieron una contribución similar en comparación con los bioconjuntos utilizados en el tratamiento de BFT, y ambos tratamientos asimilaron más microalgas que Artemia sp. nauplios.

Figura 1 (izquierda): Valores medios (porcentaje x 100 por ciento) del porcentaje de diferentes fuentes de alimento entregadas al postplato de camarón blanco del Pacífico en CT (tratamiento de control) el día 30. Figura 2 (derecha): Valores promedio (porcentaje x 100 por ciento) del porcentaje de diferentes fuentes de alimentos provistas para las cuotas de camarón blanco del Pacífico el día 30 en BT (Tratamiento Biofloc) durante la producción.

Tratamiento de CTBT

Supervivencia (%) 93,2 ± 7,11 91,2 ± 8,53
Biomasa inicial (g) 0,065 ± 0,002 0,065 ± 0,002
Biomasa final (g) 3,16 ± 0,7 3,14 ± 0,44

Tratamiento de CTBT

Temperatura (grados C) 27,8 ± 1,14 28,13 ± 1,33
Oxígeno (mg L-1) 5,72 ± 0,4 5,73 ± 0,49
Salinidad 30,16 ± 0,98a 31,33 ± 0,52b
pH 8,05 ± 0,24 8.04 ± 0.23
Alcalinidad (mg L-1 como CaCO3) 248,75 ± 2,5a 112,5 ± 14,43b
Fosfato (mg L-1) 0,99 ± 0,6 1,93 ± 1,21
Amoníaco (mg L-1) 0,65 ± 0,15 0,65 ± 0,1
Nitrito (mg L-1) 0,7 ± 0,15a 1,34 ± 0,3b
Nitrato (mg L-1) 1,32 ± 1,17 1,9 ± 2

Se observó que Artemia sp. tuvo menos crecimiento en los bordes de los postes que otras fuentes de alimentos (Figuras 1 y 2). A pesar de los beneficios económicos de reducir su uso, no se sabe en qué proporciones o qué efecto directo Artemia sp. puede causar postlarvas en los camarones, ya que esta fuente de alimento proporciona los nutrientes necesarios para el correcto desarrollo de la vida temprana de los camarones Penaeid.

Durante la fase previa al vivero, el efecto del alimento inerte (o alimento comercial) sobre el crecimiento de las postlarvas de L. vannamei aumentó con el tiempo, pero los animales jóvenes pueden obtener beneficios nutricionales en presencia de bioflocks al aumentar su crecimiento. Además de este aumento en el valor nutricional, la fertilización con carbono puede reducir la cantidad de agua en la fase previa al criadero / vivero.

Deja un comentario